PRP, platelet rich plasma (富含血小板血漿) 是一種富含「生長因子」的自體生物製劑，透過萃取出濃縮的血小板，注射到患部，能啟動並加速組織的修復。大家普遍認為，PRP製備就是把血抽出來離心，關鍵只在「轉速(G值)」和「時間」。但事實上，要能夠有效萃取出血小板，試管本身，還是有很多物理特性要考慮。以下，我們探討那些影響PRP回收率的關鍵「硬體因素」：

1. 試管的「幾何形狀」 (瘦高 vs. 胖矮)

試管的「長寬比」(Aspect Ratio) 是影響分離效率的關鍵參數之一。

您可以想像，離心就像一場賽跑。血液中的紅血球和血小板必須在離心力下移動，跑完整個試管的高度（即「沉降路徑」）。

• 瘦高型試管：在相同容量下，瘦高的試管意味著血液的高度較長，沉降路徑也更長，所以在瘦高型試管，在同樣的轉速下，需要更長的離心時間，才能將紅血球聚集到下層。

• 胖矮型試管：血液的高度較短，沉降路徑也更短，所以在矮胖型試管，在同樣的轉速下，可以用更短的離心時間達到理想分層。但是極端狀況下，太過矮胖的試管，找不到適合的離心杯，另外，在萃取上，我們也需要一定的試管高度，才能精準抽取分層介面。

結論：過長的沉降路徑不利於血小板回收。專業PRP系統的試管外型都需要經過精密計算以及測試理想離心條件。

2. 離心機的「甩動方式」 (水平 vs. 固定角度)

這可能是影響PRP品質最大的硬體因素之一：離心機的轉子 (Rotor) 設計。

• 固定角度 (Fixed-angle) 離心：這是傳統的離心方式。試管在旋轉時呈一個固定斜角 [1]。在強大的G力下，血液細胞會被G力「甩」到試管的遠端管壁上，並沿著管壁「塗抹」(smeared) 下滑。一份2020年的研究 (Miron et al.) 指出，這種方式會對細胞產生額外的「剪切應力」(shear stress) [2]，可能造成細胞創傷或血小板提早活化。

• 水平甩動 (Horizontal / Swing-out) 離心：這是目前先進PRP系統的主流。試管在開始旋轉時會自動「甩」平至水平位置。這種設計的優勢在於，它允許細胞在管內「自由移動」，僅根據自身的密度（比重）來分層。最終，這種方式能產生一個乾淨、平整、水平的血漿層與血球層界面（Buffy Coat），讓血小板回收更有效率，細胞損傷也更少 [3]。

3. 試管的「內部設計」 (分離膠 vs. 抗凝劑)

A. 分離膠 (Separation Gel)

許多市售的PRP套組會在試管中加入一層「分離膠」(Thixotropic Polymer Gel)。

• 優點：方便。這層膠體的密度介於血漿與紅血球之間，離心後會自動卡在中間，將上層的PRP與下層的紅血球/白血球完美隔開，降低了操作失誤的風險。

• 潛在的「陷阱」：一份2019年的文獻提出了血小板的異質性 [4]，血小板的大小以及重量不一，在使用分離膠體進行單次離心，因為分離膠的比重 (specific gravity)是固定的，有可能讓比重較重、大顆的血小板（高密度、高MPV的血小板）一起被分離至紅血球區，這可能導致最終得到的PRP雖然「純淨」（Leukocyte-Poor），但其活性與療效會稍微下降。

B. 抗凝劑 (Anticoagulant)

為了防止血液凝固，試管中必須添加抗凝劑。但不同種類的抗凝劑，會對血小板產生截然不同的影響。

• EDTA (Ethylenediaminetetraacetic acid)：常用於血液常規檢查，但不適合用於製備PRP。一份2016年的研究 (Amaral et al.) 發現，EDTA會導致血小板在離心後「腫脹」，使其平均體積(MPV)異常增加 [5]。這是一種人為的假象，代表血小板的細胞膜結構可能已經受損。

• ACD-A (Acid-citrate-dextrose Formula A) 或 SC (Sodium Citrate)：這些檸檬酸鹽類的抗凝劑，被證實能更好地保持血小板的原始型態與穩定性。在實驗中，使用SC（Sodium Citrate）的試管展現了高達81.21%的血小板回收率。

4. 管壁材質的差異

• 基材特性：聚烯烴（PP、PE）屬疏水 (hydrophobic)表面，容易先吸附纖維蛋白原/免疫球蛋白，進而誘發血小板附著與活化；另外玻璃更容易促凝，不建議作為使用材質。實務上多選醫療級聚丙烯（PP, Polypropylene）或 COP/COC（高透明、低萃取物）為管壁材質，再以流程與表面處理來抑制血小板附著與活化。

• 表面處理/塗層：親水 (hydrophilic)抗吸附塗層（如 PEO/PEG、PMEA）可明顯降低蛋白/血小板黏附 [6, 7]；若未做塗層，至少以 ACD-A/SC 預潤管壁以降低初始吸附。

5. 試管的「杯底形狀」 (平底 vs. 錐形)

試管底部的幾何形狀，會直接改變離心時血球堆積的物理行為，因此需要搭配不同的離心參數。

• 平底 (Flat type)：一份2017年的理論模型 (Piao et al.) 預測 [8]，平底試管在較低的G值（例如 300g）時，就能達到其最高的血小板回收率，也就是說，如過今天我們要使用軟離心 (soft spin), 使用平底試管會比較適合。

• 錐形 (Conical type)：該模型預測，錐形試管需要更高的G值（例如  450g）才能達到其峰值（約98%）。有趣的是，雖然平底管在低G值時效率較高，但在非常高的G值（> 800g）時，錐形管的回收率反而會略高於平底管，也就是說，當我們要使用硬離心 (hard spin)，取得血小板層片，錐形底座的效率會比較好。

結論：在臨床實務上，錐形管（Conical tubes）被廣泛使用，不過目前的文獻，僅為理論模型，沒有實際人體實驗的文獻。在同時有軟離心及硬離心的需求同時，在只能選一種形狀的條件下，還是優先以平底杯底為主，因為硬離心的萃取，可以用加速或加時間彌補。

結論：PRP製備是一門精密的「微環境」科學

PRP的製備，絕非「買一台離心機，隨便轉轉」如此簡單。我們需要考慮試管外型、材質、抗凝劑的選擇等，針對不同條件的試管，得到最適合的離心參數。在行動自儒，我們深知這些「魔鬼的細節」，我們不僅投資於優良的硬體設備（如: 水平轉子離心機，6分類的日本驗血設備等），更憑藉知識與臨床經驗，從抗凝劑的選擇、離心參數的設定，到黃金區域的精準抽吸，為每一位患者的獨特狀況客製化流程，確保您獲得的PRP，是真正高品質、高濃度的再生精華。

1.      Dashore, S., et al., Preparation of Platelet-Rich Plasma: National IADVL PRP Taskforce Recommendations. Indian Dermatol Online J, 2021. 12(Suppl 1): p. S12–S23.

2.      Miron, R.J., et al., Evaluation of 24 protocols for the production of platelet-rich fibrin. BMC Oral Health, 2020. 20(1): p. 310.

3.      Everts, P., et al., Platelet-Rich Plasma: New Performance Understandings and Therapeutic Considerations in 2020. Int J Mol Sci, 2020. 21(20).

4.      Ozer, K., Y. Kankaya, and O. Colak, An important and overlooked parameter in platelet rich plasma preparation: The mean platelet volume. J Cosmet Dermatol, 2019. 18(2): p. 474–482.

5.      do Amaral, R.J., et al., Platelet-Rich Plasma Obtained with Different Anticoagulants and Their Effect on Platelet Numbers and Mesenchymal Stromal Cells Behavior In Vitro. Stem Cells Int, 2016. 2016: p. 7414036.

6.      Tanaka, M., et al., Blood compatible aspects of poly(2-methoxyethylacrylate) (PMEA)--relationship between protein adsorption and platelet adhesion on PMEA surface. Biomaterials, 2000. 21(14): p. 1471–81.

7.      Lee, J.H., Y.M. Ju, and D.M. Kim, Platelet adhesion onto segmented polyurethane film surfaces modified by addition and crosslinking of PEO-containing block copolymers. Biomaterials, 2000. 21(7): p. 683–91.

8.      Piao, L., H. Park, and C.H. Jo, Theoretical prediction and validation of cell recovery rates in preparing platelet-rich plasma through a centrifugation. PLoS One, 2017. 12(11): p. e0187509.